martes, 27 de noviembre de 2018

La red neuronal del libre albedrío



Los estudios de pacientes con afecciones neurológicas inusuales revelan redes cerebrales que contribuyen al sentido del libre albedrío. El daño causado a estas redes sería responsable de su ausencia.


Cuando el investigador Ryan Darby era un residente de neurología, estaba familiarizado con algo llamado síndrome del Dr. Strangelove, o síndrome de la mano ajena (SMA), pero eso no hacía que el comportamiento de sus pacientes fuera menos desconcertante. Las personas con esta afección se quejan de que una de sus extremidades, a menudo una mano, parece actuar por su cuenta. Puede tocar y agarrar cosas o incluso desabotonar una camisa que la otra mano está abotonando. Los pacientes no pueden controlar la mano rebelde ni siquiera agarrándola o sentándose sobre ella. Parece que han perdido el control de sí mismo, esa sensación inconfundible de ser dueño de las propias acciones y que es un importante componente del libre albedrío.  Según  Darby, ahora profesor asistente de neurología en la Universidad de Vanderbilt, era uno de esos síntomas que realmente cuestionaban la mente y la forma en que produce algunos de esos conceptos tan importantes.

El síndrome de la extremidad ajena puede surgir después de que un accidente cerebrovascular cause una lesión en el cerebro. Pero aunque los pacientes confiesen los mismos síntomas excéntricos, sus lesiones no ocurren en el mismo lugar del cerebro. ¿Podría ser debido a que  las lesiones se presentaran en diferentes partes de una misma red neural, se cuestionaron los investigadores?. Para encontrar la respuesta, los investigadores analizaron imágenes cerebrales procedentes de individuos con este síndrome.  

También investigaron el mutismo acinético, una condición que deja a los pacientes sin deseos de moverse o de hablar, a pesar de no existir ningún impedimento físico. Utilizando una nueva técnica, los investigadores compararon las áreas donde se localizaban las lesiones con una plantilla de redes cerebrales, es decir, grupos de regiones que a menudo se activan en conjunto.


Resultado de imagen de neural network
Las lesiones asociadas con el síndrome de extremidad alienígena se solaparon en una red de áreas conectadas con el precuneus, una región previamente vinculada a la autoconciencia y al control de sí mismo.

En pacientes con mutismo acinético, las lesiones formaban parte de otra red neuronal centrada en la corteza cingulada anterior, que se cree está involucrada en las acciones voluntarias. Estas dos redes también incluyen regiones cerebrales, que, cuando fueron estimuladas por electrodos en estudios previos, alteraron las percepciones del libre albedrío de los sujetos, según la publicación de los investigadores en la revista Proceedings of the National Academy of Sciences USA.

El estudio sugiere que al menos algunos componentes del libre albedrío, como la voluntad y el autocontrol de los movimientos, no están localizados en ninguna área del cerebro, sino que dependen de una red de regiones. La percepción de libre albedrío puede perderse con la interrupción de cualquier parte de esa red.

Esta es una forma creativa de usar datos que han estado ahí por décadas y reconceptualizarlos para aprender algo realmente nuevo y darle sentido a cosas que antes no tenían sentido. Los estudios de muchas otras afecciones cerebrales podrían beneficiarse de este enfoque.

Basado en:

Darby RR, Laganiere S, Pascual-Leone A, Prasad S, Fox MD. Finding the imposter: brain connectivity of lesions causing delusional misidentifications. Brain [print-electronic]. 2017 Feb; 140(2): 497-507. PMID: 28082298, PMCID: PMC5278302, PII: aww288, DOI: 10.1093/brain/aww288, ISSN: 1460-2156. 


miércoles, 14 de noviembre de 2018

Astrocitos y su papel en el cerebro



Antes conocidos como el "pegamento del cerebro", los astrocitos se están destacando a medida que un amplio conjunto de herramientas revela la complejidad y la diversidad de estas células.


Astrocyte
Astrocito: Un astrocito perteneciente a un cachorro de rata
que fue investigado usando una técnica conocida como inmunobarrido.
Imagen: Rachel Kim


A mediados de la década de 1850, el anatomista alemán Rudolf Virchow y colegas que examinaban cerebros bajo el microscopio notaron estructuras misteriosas que llenaban el espacio alrededor y entre las neuronas. Virchow llamó a estas estructuras nervenkitt, literalmente "pegamento nervioso", y se tradujo como "neuroglia".

Hoy en día, los investigadores saben que los nervenkitt son en su mayoría astrocitos, que representan del 20 al 40% de todas las células en un cerebro de mamífero. Sin embargo, durante décadas, los roles de estas células abundantes se mantuvieron tan misteriosos como cuando Virchow vio por primera vez estas estructuras.

A diferencia de las neuronas, los astrocitos son eléctricamente silenciosos, por lo que su actividad no se detecta con los métodos convencionales de electrofisiología. También son asombrosamente complejos: un solo astrocito puede conectarse a decenas de miles de neuronas.

Es por eso que "no ha habido un conjunto de herramientas con las que se pudiera  explorar estas células de manera selectiva y fiable en todo el cerebro", según Baljit Khakh, neurocientífico de la Universidad de California en Los Ángeles (UCLA).

Pero Khakh y un número creciente de investigadores en todo el mundo están comenzando a ir más allá del enfoque centrado en las neuronas para observar de cerca a los astrocitos. Están desarrollando tecnologías para clasificar las células en distintos subtipos con diversos roles y descubrir cómo los astrocitos soportan y dan forma a los circuitos neuronales. Las herramientas podrían incluso ayudar a los investigadores a diseñar métodos para tratar enfermedades cerebrales.


Radios de bicicleta y copos de nieve


Cuando se tiñen con anticuerpos y se observan bajo un microscopio, los astrocitos se asemejan a las ruedas de una bicicleta: un gran cuerpo de células centrales con media docena de radios gruesos, según Shane Liddelow, neurocientífico de la Universidad de Nueva York. Pero cuando las células individuales se inyectan con un tinte fluorescente, se hacen visibles más estructuras. Sus cuerpos centrales  se ramifican en estructuras cada vez más finas, como un copo de nieve en 3D. Estas células en forma de copos de nieve envuelven cada sinapsis en el cerebro, y algunos de los extremos mas finos tienen extensiones en forma de bulbo que rodean los vasos sanguíneos, formando una zona protectora entre el tejido cerebral y la vasculatura.

Calificados como meras células de soporte durante más de un siglo, los astrocitos en realidad tienen funciones cruciales en el cerebro. Los científicos están investigando estas diversas funciones con métodos para clasificar y hacer crecer las células, así como con herramientas de edición genética y técnicas ópticas que rastrean cómo se comportan las células en los circuitos. Estas tecnologías muestran que los astrocitos ajustan sus actividades metabólicas para controlar los niveles de neurotransmisores, regulan los iones de potasio extracelulares para influir en los umbrales de la activación de las células nerviosas y liberan moléculas que promueven la formación y reducción de las sinapsis. Los astrocitos son "el principal homeostato del cerebro", según Khakh.

Para Benjamin Deneen, las primeras pistas de esa diversidad surgieron hace una década, mientras era postdoctorado en el Instituto de Tecnología de California (Caltech) en Pasadena. Él y sus compañeros de trabajo estaban analizando el tejido de la médula espinal de pollos y ratones, y encontraron que los astrocitos exhibían patrones espaciales. Es decir, las combinaciones regionales de proteínas reguladoras de unión al ADN llamadas factores de transcripción determinaban cuándo y qué subtipos de astrocitos se producen.

Eso hizo que Deneen se preguntara acerca de la heterogeneidad en el cerebro. Pero, a diferencia de la médula espinal, donde los patrones están bien definidos, cada área del cerebro parece estar sujeta a diferentes reglas.

Deneen recurrió a una técnica llamada Clasificación de Células Activadas por Fluorescencia (FACS). Utilizando la técnica en ratones que habían sido modificados genéticamente para expresar proteínas fluorescentes verdes específicamente en astrocitos, su equipo fue capaz de subdividir las células en cinco grupos distintos pero superpuestos en base a su expresión de tres proteínas de la superficie celular. Luego, los investigadores utilizaron la secuenciación de ARN para identificar firmas moleculares para cada subpoblación.

En un estudio separado, Khakh y sus colegas aislaron astrocitos de distintos circuitos cerebrales en el nucleo estriado y el hipocampo de ratones de la misma cepa. Utilizaron métodos tales como imágenes de calcio, espectrometría de masas, inmunohistoquímica, microscopía electrónica y secuenciación de ARN para sondear la función celular, morfología y características moleculares.

"Los astrocitos en diferentes partes del cerebro no son lo mismo", según Khakh. Por ejemplo, en el hipocampo, se anidan más cerca de las sinapsis neuronales excitadoras y responden con más fuerza al neurotransmisor glutamato que en las del estriado. "Esto sugiere que los astrocitos pueden ser específicos del área del cerebro, o incluso del circuito neuronal”.

Por su parte, el grupo de Deneen no solo recopiló datos moleculares de subconjuntos de astrocitos aislados con FACS, sino que también analizó la presencia de esas células en modelos de cáncer cerebral en ratones. El equipo identificó poblaciones que se correlacionaban con la progresión del tumor y la aparición de convulsiones. "Estas poblaciones podrían utilizarse como un punto de entrada para comprender las  identidades malignas o diversas de los astrocitos y sus propiedades en la enfermedad”.




Astrocyte
Los astrocitos tienen una forma de ramificación 3D distintiva.
 Imagen: Centro Nacional para la Investigación de Microscopía e Imagen, UCSD



Cultivando astrocitos


El método más rápido y fácil de cultivar astrocitos en cultivos celulares se publicó en 1980 y ha sido un puntal de la investigación. "Esencialmente, se  agita el cerebro, se espera un par de semanas, se hace crecer las células en suero, se descartan las células de la parte superior y las que quedan son astrocitos", dice Liddelow. El protocolo es rápido y barato, no requiere equipo especial y produce cientos de millones de células.

Pero hay advertencias sobre este método del "astrocito MD", que lleva el nombre de sus desarrolladores, Ken McCarthy en la Escuela de Medicina de la Universidad de Carolina del Norte en Chapel Hill, y Jean de Vellis en UCLA. Una es que cuando los astrocitos crecen en el suero, pueden comenzar a comportarse de manera muy diferente del estado de reposo fisiológico. Además, dice Liddelow, el método genera un buen número de células precursoras, lo que podría ser problemático dependiendo de lo que los investigadores quieran hacer con los cultivos celulares.

En 2011, surgió un protocolo conocido como immuno-barrido del laboratorio de Ben Barres en la Universidad de Stanford en California. Primero, el procedimiento elimina las células no deseadas a través de una serie de incubaciones en placas recubiertas con anticuerpos contra antígenos que están presentes en las superficies de esas células, y luego se aíslan los astrocitos utilizando anticuerpos que reconocen un marcador de proteína específico, conocido como integrina β-5. "Obtenemos células maduras sin suero en una placa Petri y con menos del 1% de contaminación", según Liddelow, quien utiliza la técnica en su laboratorio.

Esta técnica requiere aproximadamente 6 horas de tiempo práctico, en comparación con 2 a 3 horas para el protocolo MD. Pero las células así obtenidas pueden usarse de inmediato, mientras que el método de DM requiere otras 3 a 4 semanas. Aún así, esta técnica no siempre es la mejor opción. Su rendimiento es aproximadamente un orden de magnitud inferior al del procedimiento MD. También es más caro porque utiliza factores de crecimiento purificados en lugar de suero.

Liddelow y sus colegas han utilizado células obtenidas con la técnica de inmunobarrido para identificar dos subpoblaciones de astrocitos. Los astrocitos A1 pierden su capacidad para promover la formación de sinapsis, mientras que los astrocitos A2 sobreregulan los factores neurotróficos. De acuerdo con esas características, el equipo de Liddelow encontró una gran cantidad de astrocitos A1 en muestras de tejido obtenidos de personas con las enfermedades de Alzheimer, Huntington, Parkinson, Esclerosis lateral amiotrófica o Esclerosis múltiple, lo que sugiere que los astrocitos A1 contribuyen a la muerte celular en trastornos neurodegenerativos.

Para Henrik Ahlenius, un líder de grupo en la Universidad de Lund en Suecia, los astrocitos proporcionan un sustrato para estudiar el Alzheimer, la demencia frontotemporal y otras enfermedades relacionadas con la edad. Pero su investigación requiere astrocitos humanos, que son más grandes y tienen más sinapsis que los astrocitos de ratón. También son más difíciles de obtener.

"Si se desea estudiar la progresión de la enfermedad o los mecanismos en las enfermedades cerebrales crónicas, es muy difícil obtener una muestra del tejido", según  Ahlenius. En los raros casos en que su equipo obtiene células de biopsias o tejido post-mortem, a menudo es difícil trabajar con las muestras porque provienen de la enfermedad en etapa terminal.

En 2015, investigadores en Italia mostraron cómo se podían generar astrocitos de ratón en el laboratorio mediante el cultivo de fibroblastos con tres factores de transcripción, un proceso llamado conversión directa. Ahlenius y sus colegas han probado esas moléculas en células madre embrionarias humanas y encontraron que dos de ellas, NFIB sola o con SOX9, produjeron astrocitos con una pureza de más del 90% en solo una semana.

Estas células se comportan como los astrocitos humanos purificados: pueden captar y liberar glutamato; Responde a los factores de crecimiento y apoya las sinapsis y expresa genes similares. También se pueden usar para modelar la enfermedad de Alexander, un trastorno raro del sistema nervioso.


Astrocyte
Un astrocito teñido de tinte obtenido  del hipocampo de rata
 adquiere una apariencia de "copo de nieve". 
Imagen: Centro Nacional para la Investigación de Microscopía e Imagen, UCSD
                              

 

Utilizando la manipulación genética


Para comprender cómo se comportan los astrocitos tanto en la salud como en la enfermedad, los investigadores necesitan herramientas con las que introducir genes de manera fiable y específica. Con ese fin, el laboratorio de Viviana Gradinaru en Caltech ha diseñado vectores basados ​​en virus adenoasociados (AAV) que pueden transmitir genes al cerebro del ratón después de la inyección intravenosa. Estos vectores les permiten a los investigadores aumentar o disminuir el número de células que se etiquetan mientras mantienen una alta expresión.

En última instancia, los científicos quieren estudiar cómo interactúan los astrocitos con las neuronas. A principios de este año, el equipo de Khakh describió un ensayo de proximidad neurona-astrocito que podría determinar a cuál de las decenas de miles de sinapsis cercanas los astrocitos se conectaban realmente.

El ensayo utiliza una técnica llamada transferencia de energía de resonancia de Förster, o FRET, para detectar contactos físicos entre astrocitos y neuronas que expresan proteínas fluorescentes en su superficie. Utilizando este método y los AAV personalizados de su laboratorio, el equipo de Khakh examinó cómo los astrocitos se conectan con la comunicación neuronal en varias enfermedades. En un modelo de ratón de accidente cerebrovascular, los astrocitos marcados con estas proteínas parecían ampliar su alcance, mientras que en los animales que modelan la enfermedad de Huntington, los astrocitos se retractaron de sus procesos e interactuaron con menos sinapsis.


Diseño de circuito


Kira Poskanzer, neurocientífica de la Universidad de California en San Francisco, estudia otro aspecto más de la biología de los astrocitos: cómo responden las células a las señales externas. "Un gran objetivo en nuestro laboratorio es descubrir qué astrocitos están modulando qué neurotransmisores"

Poskanzer colabora con el químico analítico Roberto Etchenique en la Universidad de Buenos Aires para diseñar compuestos "atrapados", en los que los neurotransmisores se unen de manera reversible a grupos químicos que restringen sus interacciones con otras moléculas en la célula. Los compuestos son sensibles a la luz, y liberarán la molécula atrapada cuando se iluminen con luz de una longitud de onda particular.

Hasta el momento, los investigadores han generado formas fotoactivables de los neurotransmisores glutamato, GABA y serotonina, y están desarrollando una forma fotoactivable de noradrenalina. "Estamos tratando de construir un arsenal de herramientas para poder" jugar a dios "con el circuito", según Poskanzer, es decir, activar mediante fotones varios neurotransmisores y ver cómo responden los astrocitos.

Mientras tanto, para investigar qué sucede cuando se silencian los astrocitos, el equipo de Khakh ha desarrollado un método que utiliza una bomba molecular para mover los iones de calcio desde el interior de la célula hacia el exterior y, por lo tanto, amortiguar las señales de calcio de los astrocitos en el cerebro del ratón. Y su equipo está trabajando con Loren Looger en el Campus de Investigación Janelia del Instituto Médico Howard Hughes en Ashburn, Virginia, para desarrollar sensores para ATP y otras moléculas liberadas por los astrocitos.

Estas herramientas deberían ayudar a los investigadores a analizar separadamente la biología de la neuroglia y la de las neuronas que forman el cerebro interconectado. Las tecnologías están proporcionando una apreciación sin precedentes de la riqueza y la dinámica en la forma en que los astrocitos contribuyen a la función del cerebro como órgano.


Basado en: Nature 563, 141-143 (2018) doi: 10.1038/d41586-018-07197-0

domingo, 4 de noviembre de 2018

Descubiertos los circuitos cerebrales que controlan el comportamiento




Los científicos del Instituto  Janelia y del Instituto Allen trabajan conjuntamente, combinando análisis genéticos, mapas anatómicos y estudios detallados de la actividad neuronal para revelar los roles de las neuronas en el control del movimiento.

El cerebro del ratón contiene aproximadamente 80 millones de neuronas, todas agrupadas en un espacio del tamaño de una avellana. Esas células se diferencian en una gran variedad de formas y tamaños, y sus conexiones entre sí son de, al menos, miles de millones.

El cerebro depende de este circuito para interpretar la  información sobre el mundo, aprender de las experiencias y controlar los movimientos. Las células nerviosas que se entremezclan en este espacio reducido forman una red compleja, lo que dificulta que los científicos comprendan qué células son responsables de qué tareas.

Ahora, en dos artículos publicados en la revista Nature, los investigadores del Instituto Janelia y del Instituto Allen para la Ciencia del Cerebro han descubierto cómo dos tipos de células nerviosas entremezcladas se dividen el trabajo para planificar e iniciar movimientos. Al integrar el análisis de las formas, la actividad de los genes y la función de las neuronas, una por una, el equipo ha descubierto qué neuronas son responsables de estos trabajos, distintos, pero estrechamente relacionados.

La combinación de análisis tan extensos representa una gran hazaña técnica, según el líder del grupo de Janelia, Karel Svoboda. Es un nuevo enfoque para entender la función cerebral. El trabajo requirió múltiples equipos de científicos en varios institutos que se unieron para resolver un solo problema. Svoboda cree que este tipo de enfoque será necesario para ayudar a los investigadores a resolver las cuestiones más complejas de la neurociencia.


neurons sending signals to different regions of the brain
Las neuronas envían señales a diferentes regiones del cerebro.
Dentro de la corteza motora del cerebro del ratón, un conjunto de neuronas (verde)
envía proyecciones al tálamo,
y otro conjunto (magenta) se proyecta a una región del tronco cerebral llamada médula.
 Imagen: Proyecto MouseLight, Janelia Research Campus


 Un nuevo territorio neural al descubierto


En todo el mundo, los investigadores se han embarcado en la construcción de  mapas neuronales completos para descubrir el funcionamiento  del cerebro.
Los neurocientíficos están explorando las elaboradas redes del cerebro desde muchos ángulos diferentes, registrando estructuras celulares, características moleculares y actividades neuronales. La combinación de esta información dispar para obtener información sobre la función cerebral sigue siendo un desafío sobresaliente.

En Janelia, los científicos en el equipo del proyecto MouseLight han estado determinando la estructura precisa de las neuronas en el cerebro del ratón, una tarea masiva que consiste en rastrear meticulosamente los circuitos nerviosos de las neuronas individuales a través de miles de imágenes del cerebro. Los esfuerzos complementarios en el Instituto Allen están registrando la expresión génica de las neuronas, revelando similitudes y diferencias clave entre ellas y ofreciendo pistas sobre la función celular.



whole brain fluorescence
Cerebro tratado con fluorescencia:
Usando una técnica de imágenes de fluorescencia de cerebro completo desarrollada en Janelia,
los científicos capturaron axones de neuronas del tracto piramidal que provenían de la corteza motora.
 Imagen : Proyecto MouseLight, Janelia Research Campus




En este trabajo, los científicos de Janelia, Mike Economo, Sarada Viswanathan, Loren Looger, Svoboda y sus colegas se unieron a los científicos del Instituto Allen para crear perfiles completos de expresión génica de las neuronas dentro del neocórtex del ratón. El neocórtex es la parte más grande del cerebro de los mamíferos responsable de las funciones cognitivas superiores. El equipo se centró en la corteza motora lateral anterior (ALM), un área involucrada en la planificación y ejecución de movimientos.

Los grupos del Instituto Janelia y del Instituto  Allen han estado colaborando durante años, según  Svoboda. Su laboratorio ha trabajado para describir cómo las neuronas corteza motora lateral anterior (ALM) codifican la información y los movimientos de control, y los científicos del Instituto Allen utilizaron una nueva tecnología de secuenciación del ARN de una sola célula para analizar la composición molecular de las neuronas ALM individuales.

Bosiljka Tasic, Hongkui Zeng y sus colegas del Instituto Allen determinaron el conjunto completo de moléculas de ARN, el transcriptoma, presente en cada una de las 23,822 neuronas del neocórtex. Esto generó una imagen completa de qué genes se activaron en cada neurona: aproximadamente 9,000 genes por neurona, en promedio. Dentro del vasto conjunto de datos, los investigadores identificaron más de 130 grupos de neuronas que compartían transcriptomas.


Definición de roles


A continuación, el equipo correlacionó sus hallazgos moleculares con la información estructural obtenida a través del proyecto MouseLight de Janelia.



gene expression patterns
Patrones de expresión génica:
Los científicos del Instituto Janelia y del Instituto Allen identificaron
 diferentes tipos de células en la corteza motora basándose en los patrones de expresión génica.
 Estos tipos de células se representan como "islas" de colores debajo del cerebro.
Las dos islas circulares definidas en base a las propiedades moleculares
corresponden a los tipos de morfología verde y rosa.
Imagen: Michael Economo, Janelia Research Campus


Los científicos se centraron en las neuronas grandes en la corteza motora lateral anterior (ALM) que llevan la información fuera de la corteza. Dentro de este subconjunto de neuronas, dos grupos de células definidas por sus transcriptomas también compartían características anatómicas. Pero, sus circuitos a otras partes del cerebro son distintos, según descubrió el equipo. Un conjunto se conecta al tronco cerebral, donde residen las neuronas motoras que dirigen al cuerpo a realizar acciones. El segundo conjunto se conecta con el tálamo, una especie de centralita de comunicaciones en el cerebro.

En conjunto, estas células ya han recibido atención de los neurocientíficos porque son particularmente vulnerables a la enfermedad neurodegenerativa. "Pero realmente no se ha apreciado que estas neuronas tengan una característica especial y podrían  desempeñar diferentes funciones", según Economo, un investigador postdoctoral en el laboratorio de Svoboda.

Para separar esos roles, Economo analizó  cada clase de neuronas  individualmente, manipulando y midiendo la actividad mientras los ratones realizaban una tarea simple: moverse en una dirección particular en un momento determinado. Un grupo de neuronas, las que conectan el corteza motora lateral anterior (ALM) con el tálamo, son cruciales para la planificación de movimientos futuros, revelaron los experimentos. El otro conjunto de neuronas, aquellas que conectan la corteza motora lateral anterior (ALM) con el tronco cerebral, se requieren para iniciar el movimiento. En pocas palabras, los dos tipos de neuronas se dividen en dos clases y tienen comportamientos distintos, según Svoboda. "Estos tipos de neuronas llevan diferentes mensajes a diferentes regiones del cerebro para producir diferentes funciones".

Al reunir múltiples flujos de datos, el equipo pudo aportar claridad al funcionamiento de un circuito complejo.

Los científicos siempre pueden encontrar maneras de dividir las células en grupos, pero en este caso, los grupos ofrecen una imagen clara del papel de cada tipo de célula en la configuración del movimiento. Es un paso clave para desentrañar la complejidad de la corteza cerebral.

Aún no se han explorado las funciones de más de 100 tipos de células definidas molecularmente, solamente en el córtex visual y la corteza motora lateral anterior (ALM), por lo que los científicos tienen mucha complejidad por desentrañar. Pero, con la aceleración de los nuevos instrumentos de investigación en desarrollo y los esfuerzos de mapeo a gran escala, este tipo de decodificación neuronal pronto nos proporcionará mucho mas conocimiento. 


Basado en:

Michael N. Economo, “Distinct descending motor cortex pathways and their roles in movement.” Nature. Published online October 31, 2018.
Bosiljka Tasic,. “Shared and distinct transcriptomic cell types across neocortical areas.” Nature.Published online October 31, 2018.